Автор работы: Пользователь скрыл имя, 01 Марта 2013 в 14:24, диссертация
Цель исследования. Целью работы являлось создание биосенсоров электрохимического типа для детекции сульфоароматических и фенольных соединений на основе бактерий родов Comamonas и Pseudomonas, являющихся деструкторами п-толуолсульфоната и фенола, соответственно.
Список используемых сокращений 6
1. ВВЕДЕНИЕ 7
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. Биосенсоры как направление
в аналитической биотехнологии 13
2.1. Типы преобразователей, используемые в
биосенсорах. Электрохимические преобразователи 14
2.2. Типы биологических материалов, применяемых в
рецепторных элементах биосенсоров 15
2.2.1. Сенсоры на основе ферментов, антител и
иммунных комплексов, ДНК, животных и
растительных клеток, клеточных органоидов 15
2.2.2. Сенсоры на основе микробных клеток 17
2.2.2.1. Микробные сенсоры в мониторинге газовых
и водных сред 19
2.2.2.1.1. Мониторинг атмосферы 19
2.2.2.1.2. Мониторинг гидросферы 20
2.2.2.2. Классы соединений, детектируемых с помощью
микробных биосенсоров 21
2.2.2.2.1. Определение БПК 21
2.2.2.2.2. Детекция мутагенов и поллютантов 25
2.2.2.2.3. Сенсоры для определения анионных
поверхностно-активных веществ (ПАВ) 28
2.2.2.3. Методы иммобилизации биологического
материала в рецепторном элементе сенсора 29
2.3. Микроорганизмы-деструкторы и их использование
в разработке биосенсоров для детекции токсичных
соединений 30
2.3.1. Микроорганизмы-деструкторы токсичных соединений 30
2.3.2. Методы направленной модификации
микроорганизмов для придания им деструктивных свойств 34
2.3.3. Плазмидная детерминированность генов биодеградации 35
2.4. Потребности в детекции ароматических и
сульфоароматических соединений 36
2.4.1. Ароматические соединений и их влияние на экосистемы 36
2.4.2. Краткая характеристика сульфоароматических
соединений 36
2.4.3. Возможный механизм биодеградации
толуолсульфоната (ТС) 37
2.5. Характеристика штамма Comamonas testosteroni 38
3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ 41
3.1. Изучение Исследование способности микроорганизмов
к деградации толуолсульфоната (ТС) 41
3.1.1. Трансформация ТС свободными клетками 41
3.1.2. Деградация ТС иммобилизованными клетками 42
3.1.3. Определение скорости ферментативной реакции клеток 42
3.1.4. Деградация ТС в непрерывных условиях 42
3.1.5. Контроль процесса деградации 43
3.1.6. Получение плазмидного и бесплазмидного варианта
штамма C. testosteroni 43
3.2. Разработка микробного сенсора для определения
п-толуолсульфоната 44
3.2.1. Среда культивирования 44
3.2.2. Иммобилизация микроорганизмов 44
3.2.3. Исследование деградирующей активности
микроорганизмов 44
3.3. Разработка микробного сенсора для детекции фенола 45
3.3.1. Объект исследования 45
3.3.2. Штаммы-деструкторы фенола 46
3.3.3. Иммобилизация клеток 46
3.3.4. Хранение беактериальных штаммов 47
3.3.5. Скорость окисления субстрата
бактериальными клетками 47
3.4. Характеристика полярографической измерительной
системы 48
3.5. Деградация фенола в колоночном реакторе с
иммобилизованным активным илом установки
биохимочистки (БХО) 49
3.5.1. Отбор проб активного ила 49
3.5.2. Иммобилизация активного ила 49
3.5.3. Условия эксперимента 49
3.5.4. Контроль на входе и выходе колонки 49
3.5.5. Данные по работе установки биохимочистки 49
3.5.6. Определение фенола 50
3.6. Оптимизация работы установки БХО 50
3.6.1. Концентрация растворенного кислорода 50
3.6.2. Проведение замеров 50
3.7. Статистическая обработка полученных результатов 50
3.8. Основные технические параметры анализатора 50
4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ 51
4.1. Биодеградация ТС с помощью
C.testosteroni BS1310(pBS1010) 52
4.1.1. Деградация ТС свободными и иммобилизованными
клетками в периодических условиях 52
4.1.2. Деградация ТС в непрерывных условиях 54
4.2. Сенсор для детекции п-толуолсульфоната (ТС) 57
4.2.1. Скрининг штаммов-деструкторов арилсульфонатов 57
4.2.2. Характеристика штамма Comamonas testosteroni 57
4.2.3. Характеристика сенсоров на основе
плазмидсодержащего и бесплазмидного штамма C. testosteroni 58
4.2.4. Исследование работы сенсора на основе клеток
Comamonas testosteroni в проточной системе 76
4.3. Разработка микробного биосенсора для детекции
фенола 80
4.3.1.Скрининг штаммов-деструкторов фенола 80
4.3.2. Характеристика штамма 32-I
(Субстратная специфичность) 84
4.3.3. Характеристика сенсоров на основе
плазмидсодержащего и бесплазмидного вариантов
штамма 32-I 85
4.4. Возможные пути решения практических задач
с применением биосенсорного подхода 97
4.4.1. Деградация целевых соединений сточных вод
иммобилизованными на колонке микроорганизмами
установки биохимочистки сточных вод (БХО) 100
4.4.2. Использование полученных данных для оценки
эффективности процесса очистки стоков в аэротенках
установки биохимической очистки 106
4.4.2.1. Исходное состояние установки биохимочистки 106
4.4.2.2. Результаты проведенных технических и
технологических мероприятий на сооружениях БХО 111
5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ 116
6. ВЫВОДЫ 118
7. ЛИТЕРАТУРА 120
97. Microbial Sensor for Determination of Tannic Acid/ Y. B. Zhao, M. L. Wen, S. Q. Liu, E. Z. H. Liu, W. D. Zhang, Y. Y. Yao, C. Y. Wang// Microchemical Journal.- 1998.- Vol. 60; № 3.-P. 201 - 209.
98. An IFSET-algal (Chlamydomonas) hybride provides a system for eco-toxicological tests/ D. Schubnell, M. Lehmann, W. Bawmann, F. G. Rott, B. Wolf, C. F. Beck// Biosensors & Bioelectronics.- 1999.- Vol. 14; № 5.-P. 465 - 472.
99. D. Frense, A. Muller, D. Beckmann. Detection of environmental pollutants using optical biosensor with immobilized algae cells// Sensors and Actuators B.- 1998.- № 3.-P. 256 - 260.
100. Клетки метилотрофных дрожжей как биологически активный материал для создания сенсорных устройств. Формальдегидный анализатор на основе рН-чувствительных полевых транзисторов/ Корпан Я. И., Гончар М. В., Стародуб Н. Ф., Сибирный А. А., Ельская А. В// Биохимия.- 1994.- Том. 59; № 2.-С. 201 – 205.
101. Microscale biosensors for environmental monitoring/ L. R. Damgaard, L. H. Larsen, N. P. Revsbech, A. Denmark// Trends in analytical chemistry.- 1995.- № 7.-Р. 637 - 643.
102. A microbial sensor for BOD/ K. Riedel, K. P. Lange, H - G Stein, M. Kuhn P. Ott and F. Scheller// General Institute of Molecular Biology, Department of Enzymology, Academy of Sciences of G. D. R., Berlin, 1989.- Р. 87 - 94.
103. А. А. Туманов,
М. Н. Глухоев, Г. М.
104. J. C. Morey. A Manufacturing Technology for Biosensing// Trends in analytical chemistry.- 1994.- № 6.-Р. 532 - 541.
105. Simultaneous mixture analysis using a dynamic microbial sensor combined with chemometric/ M. Slama, C. Zaborosch, D. Wienke, V. Spener// Analytical Chemistry.- 1996.- № 12-P. 3845 - 3850.
106. Biosensors for Environmental Controle/ H.Suzuki, H.N.Kojima, A.Sugama, F.Takei, K.Ikegami, E.Tamiya and I.Karube// Electroanalysis.- 1989.- Vol. 12; № 1.-Р. 305.
107. I. Karube. Microbial sensor/ Journal of Biotechnology.- 1990.- № 3-P. 255 - 266.
108. Microbial Biosensor for Sulfite Detection/ J.L.Marty, N.Mionetto, T.Nogure, F.Ortega, C.Roy// Biosensors and Bioelectronics.- 1993.- Vol. 8; № 3.-Р 273 - 279.
109. H.Muramatsu, E.Tamiya and I.Karube. Microbial sensor for Nitrite// Analytica Chimica Acta.- 1991.- № 1-Р. 13.
110. I.Karube and E.Tamiya. Biosensors for environmental control// Pure and Appl. Chem.- 1987.- № 4-Р. 545 - 554.
111. I Karube & E. Tamiya. Biosensors for environmental control// Pure and Appl. Chem.- 1987.- № 4-P. 545 - 554.
112. M. Nassens, C. Tran-Minh. Whole - cell biosensor for determination of volatile organic compounds in the form of aerosols// Analytica Chimica Acta.- 1998.- № 2-P. 153 - 158.
113. G. Y. Tai, M. L. Wen, C. Y. Wang. Bacteria-Based Biosensor for Determination of Hydrogen Peroxyde// Biochemical Journal.- 1996.- № 2-P. 152 - 157.
114. Клетки метилотрофных дрожжей как биологически активный материал для создания сенсорных устройств. Формальдегидный анализатор на основе рН-чувствительных полевых транзисторов/ Я. И. Корпан, М. В. Гончар, Н. Ф. Стародуб, А. А. Сибирный, А. В. Ельская// Биохимия.- 1994.- Том. 59; № 2.-С. 201 - 205.
115. Feasibility of using prokaryote biosensors to assess acute toxicity of polycyclic aromatic hydrocarbons/ B. J. Reid, K. T. Semple, C. J. Macleod, H. J. Weitz, Y. I. Paton// FEMS Microbiology Letters.- 1998.- Vol. 169; № 2.-P. 227 - 233.
116. Development and Characterization of a Whole-Cell Bioluminescent Sensor of Bioavailable Middle-Chane Alkanes in Contaminated Growndwater Samples/ P. Sticher, M. C. M. Jaspers, K. Stemmler, H. Harms, A. J. B. Zehnder, J. R. van der Meer// Applied and Environmental Microbiology.- 1997.- Vol. 63; № 10.-P. 4053 - 4060.
117. V. Vollenberger, F. Scheller, F. Azzat. Microbial membrane electrode for steroid assay// Analytical Letters.- 1980.- № 10-P. 1201 - 1210.
118. A rapid bioassay to detect mycotoxins using a melanin precursor overproducer mutant of the ciliate tetrahymena thermiphila/ A. M. Gonzaulez, L. Beniutez, T. Soto, J. R. de Lacea, J. C. Gutieurrez// Cell Biology International.- 1997.- Vol. 21; № 4.- P. 213 - 216.
119. S.-C. Chena, J.-K. Lin. The respiratory responses to cyanide of a cyanide-resistant Klebsiella oxytoca bacterial strain// FEMS Microbiology Letters. 1999.- № 1-P. 37 - 43.
120. Biosensors for environmental control/ T. Lee, N.Gotoh, E.Niki, K.Yokoyama, M.Tsuzuki, T.Takeuchi and I.Karube// Analytical Chemistry.- 1995.- Vol. 67; № 6.- Р. 637 - 644.
121. K. Riedel. Microbial sensors and their applications in environment// Experimental technique of physics.-1994.- № 1-Р. 63 - 76.
122. A portable amperometric biosensor system for the monitoring of heavy metal ions, bacteria, pesticides in waste waters/ JV Bannister// Cranfield university.- 1996.- № 3-Р. 77 – 87.
123. I.Karube, I. Nomura, Arikawa. Biosensors for Environmental Control//Trends in analytical chemistry.- 1996.- № 1-Р. 32 - 43.
124. Determination of BOD-values of starch-containing wastewater by a BOD-biosensor/ M. Reiss, A. Heibges, J. Metsger, W. Martmeier// Biosensors and Bioelectronics.- 1998.- № 10-P. 1083 - 1090.
125. Disposable sensor for biochemical oxygen demand/ Z. Yang, H. Suzuki, S. Sasaki, I. Karube// Applied Microbiology and Biotechnology.- 1996.- № 1-P. 10 - 19.
126. V. R. Li, J. Chu. Study of BOD microbial sensors for waste water treatment control// Applied Biochemistry and Biotechnology.- 1991.- № 28 – 29-Р. 855 - 862.
127. Microbial sensors: Fundamentals and Application for Process Control/ K. Riedel, R. Renneberg, U. Wollenberger, G. Kaiser & F. W. Scheller// J. Chem. Tech. Biotechnol.- 1989.- Vol. 44; № 1-Р. 85 - 106.
128. F. Li, T. C. Tan, Y. K. Lee. Effects of preconditioning and microbial composition on the sensing efficasy of a BOD biosensor// Biosensors and Bioelectronics.- 1994.- № 3-P. 197 - 205.
129. M. N. Kim, H. B. Kwon. Biochemical oxygen demand sensor using Serratia marcescsns LSV 4// Biosensors and Bioelectronics.- 1999.- № 1-P. 1 - 7.
130. F. Li, C. Tan. Effect of heavy metal ions on the efficasy of a mixed Bacilli BOD sensor// Biosensors and Bioelectronics.- 1994.- № 4 – 5-P. 315 - 324.
131. Microbial sensor for rapid estimation of the Biochemical Oxygen Demand (BOD) in presence of heavy metal ions/ M. Slama, C. Zaborosh, F. Spener// In: Int. Conference - Heavy Metals in the Environment – Edinburgh, 1995.- Vol. 2-P. 171 - 174.
132. Disposable sensor for measuring the biochemical oxygen demand for nitrification and inhibition of nitrification in wastewater/ A. Konig, T. T. Backmann, J. V. Metzger, R. D. Schmid// Applied Microbiology and Biotechnology.- 1999.- № 1-P. 112 - 117.
133. Э. М. Трухан. Биосенсоры в системе оперативной оценки пригодности среды обитания// Сенсорные системы.- 1998.- № 1-С. 36 - 44.
134. I. Karube. Pollutant concentration sensor which used microorganisms// Techno Jap.- 1991.- № 10-P. 110.
135. Microbial sensor for preliminary screening of mutagens utilising a phage induction test/ I. Karube, K. Sode, M. Suzuki, T. Nakahara// Analytical Chemistry.- 1989.- № 21-P. 2388 - 2391.
136. Monitoring of Genotoxicity Recombinant Escherichia Coli Cells as Biodetector System for Genotoxins/ G. Homeck, L. R. Patryn, P. Rettberg, O. Komova, S. Kozubek, E. A. Krasavin// Analytical Chemistry.- 1989.- Vol. 62; № 2.- P. 121 - 129.
137. Feasibility of using prokaryote biosensors to assess acute toxicity of polycyclic aromatic hydrocarbons/ B. J. Reid, K. T. Semple, C. J. Macleod, H. J. Weitz, C. I. Paton// FEMS Microbiology Letters.- 1998.- Vol . 169; № 3.- P. 227 - 233.
138. A. Konig, K. Riedel, J. W. Metsger. A microbial sensor for detecting inhibitors of nitrification in wastewater// Sensors and Actuators B.- 1998.- № 3-P. 285 - 288.
139. Whole cell - and protein - based biosensors for the detection of bioavailable heavy metals in environmental samples/ Ph. Corbisier, D. van der Lelie, B. Borremans, A. Provoost, V. Le Lorenzo, N. L. Brown, J. R. Lloyd, J. L. Hobman, E. Gsoregi, G. Johansson, Bo Mattiasson// Analytica Chimica Acta. 1999.- Vol. 387; № 3.- P. 235 - 244.
140. K. Riedel, R. Renneberg and F. Sheller. Adaptable microbial sensors// Analytical letters.- 1990.- № 5-Р. 757 - 770.
141. Cell Biosensor for Detection of Phenol in Aqueous Solutions/ Rainina E. I., Badalian I. E., Ignatov O. V., Fedorov A. Y., Simonian A. L., Varfolomeyev S. D// Applied Biochemistry and Biotechnology.- 1996.- Vol.56; № 2.-Р. 117 - 127.
142. T. T. Bachmann, U. Billtewski, P. O. Sohmid. A Microbial Sensor Based on Pseudomonas Putida for Phenol, Benzoic Acid and Their Monochlorinated Derivatives Which Can be Used in Water and n-Hexane// Analytical Letters.- 1990.- № 14-P. 2361 - 2373.
143. K-D Vorlop, A. Muscat, J. Beyersdorf. Entrapment of microbial cells within polyurethane hydrogel beads with the advantage of low toxicity// Biochemical Techniques.- 1997.- № 6-P. 483 - 488.
144. S-P Cheong,T-C Tan. An amperometric benzene sensor using whole cell Pseudomonas putida ML2// Biosensors and Bioelectronics.- 1994.- № 1-P. 1 - 9.
145. Thavarungkul P., Hakanson H., Matiasson B. Comparative study of cell-based biosensor using Pseudomonas cepacia for monitoring aromatic compounds// Analytica Chimica Acta. – 1991.- № 1-Р. 17 - 23.
146. Optical Biosensor for Environmental On-Line Monitoring of Naphtalene and Salycilate Bioavailability with an Immobilized Bioluminescent Catabolic Reporter Bacterium/ A. Heitzer, K. Malachowsky, J. E Thonnard, P. L. Bienkowski, D. C. White, G. S. Sayler// Applied and Environmental Microbiology.- 1994.- Vol. 60; № 5.- P. 1487 - 1494.
147. Штамм Comamonas testosteroni BS1310 (pBS1010) как основа биосенсорного анализатора сульфоароматических соединений/ А. А. Макаренко, С. В. Балашов, П. В. Ильясов, А. Н. Решетилов// Прикладная биохимия и микробиология. 1999.- № 4-С. 417 – 421.
148. Защитное действие агара при иммобилизации штаммов-деструкторов ароматических соединений/ А. Ю. Федоров, Е. В. Волченко, И. Н. Сингирцев, В. Н. Корженевич, Г. М. Шуб// Прикладная биохимия и микробиология. 1999.- Том 35; № 2.- С. 165 - 172.
149. MoO3 - based sputtered thin films for fast NO2 detection/ M. Ferroni, V. Guidi, G. Martinelli, M. Sacezdoti, P. Nelli, G. Sberveglieri// Sensors and Actuators B.- 1998.- Vol. 51; № 3.- P. 176 - 180.
150. Titanyl phthalocyanine gas sensor for NO2 detection/ C. J. Liu, C. H. Peng, Y. H. Ju, J. C. Hsieh// Sensors and Actuators B.- 1998.- № 4-P. 264 - 269.
151. Н. А. Платэ, В. В. Чупов. Полимерные системы, содержащие микроорганизмы и биосенсоры на их основе (Обзор)// Высокомолекулярные соединения.- 1994.- № 11-С. 1862 - 1875.
152. Давиденко Т. И., Севостьянов О. В., Чичкина М. А. Скрининг морских микроорганизмов на способность к биодеградации органических поллютантов// Микробиологический журнал.- 1994.- № 1-С. 50 - 59.
153. Degradation of 2,4-Dinitrophenol by two Rhodococcus Erythropolis strains, HL 24-1 and HL 24-2/ H. Lenke, D. H. Pieper, C. Bruhn, H-J Knackmuss// Applied and Environmental Microbiology.- 1992.- № 9-P. 2928 - 2932.
154. H. Lenke, H-J Knackmuss. Initial Hydrogenation and Extensive Reduction of Substituted 2,4-Dinitrophenols// Applied and Environmental Microbiology.- 1996.- № 3-P. 784 - 790.
155. Degradation of 2,4-Dinitrophenol by two Rhodococcus erythropolis strains, HL 24-1 and HL 24-2/ H. Lenke, D. H. Pieper, C. Bruhn, H-J Knackmuss// Applied and Environmental Microbiology.- 1992.- № 9-P. 2933 - 2937.
156. И. Н. Сингирцев, В. Ю. Крестьянинов, В. И. Корженевич. Биологическая деструкция 2,4-динитрофенола// Прикладная биохимия и микробиология.- 1994.- № 2-С. 250 - 254.
157. B. J. Feigel, H-J. Knackmuss. Syntrophic interactions during degradation of 4-aminobenzenesulphonic acid by a two species bacterial culture// Archives of Microbiology.- 1993.- № 2-P. 124 - 130.
158. Polarographic and voltammetric determination of selected nitrated polycyclic aromatic hydrocarbons/ A. Barek, M. Pumera, A. Muck, M. Kaderiabrova, A. Zima// Analytica Chimica Acta.- 1999.- Vol. 393; № 2.- P. 141 - 146.
159. С. В. Балашов, А. М. Боронин. Бактерии - деструкторы сульфоароматических соединений из активного ила// Микробиология.- 1996.- № 5-С. 627 - 631.
160. Desulfonation of Linear Alkylbenzenesulfonate Surfactants and Related Compounds by Bacteria/ M. A. Kertesz, P. Kolbener, P. Stodeinger, S. Bell, A. M. Cook// Applied and Environmental Microbiology.- 1994.- Vol. 60; № 7.- P. 2296 - 2303.
161. Mineralization of Sulfonated Azo Dyes and Sulfanilic Acid by Phanerochaete chrysosporium and Streptomyces Chromofuscus/ A. Pabzszynski, M. B. Pasti Grigsby, S. Gobzezynski, R. L. Crawford, D. L. Crawford// Applied and Environmental Microbiology.- 1992.- Vol. 35; № 11.- P. 3595 - 3604.
162. B. J. Feigel, H-J. Knackmuss. Syntrophic interactions during degradation of 4-aminobenzenesulphonic acid by a two species bacterial culture// Archives of Microbiology.- 1993.- № 2-P. 124 - 130.
163. R. J. Cain & D. R. Farr. Metabolism of Arylsulfonates by Microorganisms// Biochemical Journal.- 1988.- № 6-P. 669 - 677.
164. A. J. Willets. Microbial
Metabolism of alkylbenzenesulphonates. Fungal metabolism of 1-phenylundecane-b-sulphonate
and 1-phenyldodecane-p-sulphonate/
165. Microbial sensors for determination of aromatics and their chloroderivatives. Part 2: Determination of chlorinated phenols using a Rhodococcus - containing biosensor/ K. Riedel, J. Hensel, S. Rothe, B. Neumann, F. Scheller// Appl. Microbiol. Biotechnology.- 1993.- Vol. 38; № 5.-Р. 556 - 559.
166. Безбородов
А.М. Ферменты микроорганизмов,
167. Dynamics of phenol degradation by Pseudomonas putida/ Allsop P. J., Chisti Y., Moo-Young M., Sullivan G. R// Biotechnology and Bioengeneering.- 1993.- № 5-P. 572 – 580.
168. K. T. Semple, R. B. Cain. Metabolism of Phenols by Ochromonas danica// FEMS Microbiology Letters.- 1995.- № 3-P. 253 - 257.
169. Lee J. – Y., Choi Y. – B., Kim H. – S. Simultaneous biodegradation of toluene and p-xylene in a novel bioreactor: Experimental results and mathematical analysis// Biotechnol. Progr.- 1993.- № 1-P. 40 - 53.
170. Козловский С. А., Наумов А. В., Цой Т. В. Выделение и характеристика штаммов микроорганизмов, утилизирующих фенол// Химия и технология воды.- 1993.- № 5-С. 383 – 389.
171. Microbial Sensors for Determination of Aromatics and Their Chloroderivatives. 2. Determination of Chlorinated Phenols Using a Rhodococcus-Containing Biosensors/ Riedel K., Hensel J., Rothe S., Neumann B., Scheller F// Applied Microbiology and Biotechnology.- 1993.- Vol. 38; № 4-Р. 556 - 559.
172. Initial steps in the degradation of benzenesulfonic acid, 4-toluenesulfonic acid and orthanilic acid in Alcaligenes sp. strain O – 1/ Thurnheer T., Zunner D., Hodlinger O., Leysinger T., Cook A// Biodegradation.- 1990.- Vol. 1; № 1.- P. 55 - 64.
173. Wittich R.M., Rast H.G., Knackmuss H.-J. Degradation of naphtalene-2,6- and naphtalene- 1,6-disulfonic acid by a Moraxella sp.// Applied and Environmental Microbiology.- 1988.- № 7-P. 1842 - 1847.
174. Willets A.J., Cain R.B. Microbial metabolism of alkylbenzenesulphonates. Bacterial metabolism of andecylbenzene-p-sulphonate and dodecylbenzene-p-sulphonate // Biochemical Journal.- 1972.- № 2.- P. 389 - 402.
175. Feigel B.J., Knackmuss H.-J. Syntrophic interactions during degradation of 4-aminobenzenesulfonic acid by a two species bacterial culture// Archives of Microbiology.- 1993.- № 2-P. 124 - 130.
176. Cain M.B., Farr D.R. Metabolism of arylsulphonates by microorganisms// Biochemical Journal.- 1968.- № 7-Р. 859.
177. Mineralisation of sulfonated azo dyes and sulfanilic acid by Phanerochaete chrysosporium and Streptomyces chromofuscus/ Paszcynski A., Pasti-Grigsby M.B., Goszczynski S., Crauford R.L., Crauford D.L// Appl. Environ. Microbiol.- 1992.- Vol. 58; № 11.- P. 3598 - 3604.
178. Sublette K. L., Ganapathy E. V., Schwartz S. Degradation of munition Wastes by Phanerochaete chrysosporium : [pap] 13th Symp. Biotechnol. Fuels and Chem.; Colorado Springs, Colo, May 6 – 10, 1991// Applied Biochemistry And Biotechnology.- 1992.- № 34 – 35-P. 709 – 723.
179. Mineralisation of sulfoaromatic compounds by microorganisms/ M. Janke, T. El-Banna, R. Klintworth, G. Auling// Applied Biochemistry And Biotechnology.- 1991.- № 1-P. 14 - 19.
180. Locher H., Leisinger T., Cook A. 4-sulphobenzoate 3,4-dioxygenase, purification and properties of desulphonative two-component enzyme system from Comamonas testosteroni T – 2// Biochemical Journal.- 1991.- № 7-P. 833 - 842.
181. Brilon C., Beckmann W., Knackmuss H.-J. Catabolism of Naphtalenesulfonic acid by Pseudomonas sp. A3 and Pseudomonas sp. C22// Appl. Environ Microbiol.- 1981.- № 1-P. 44 - 55.
182. 3-nitrobenzenesulfonic acid, 3-aminobenzenesulfonic acid and 4-aminobenzenesulfonic acid as sole carbon sources for bacteria/ Locher H.H., Thurnheer T., Leisinger T., Cook A.M// Appl. Environ. Microbiol.- 1989.- № 2-P. 492 - 494.
183. Locher H.H., Leisinger T., Cook A.M. Degradation of p-toluenesulphonic acid via sidechain oxidation, desulphonation and meta ring cleavage in Pseudomonas (Comamonas) testosteroni T – 2// J. Gen. Microbiol.- 1989.- № 7-P. 1969 - 1978.
184. Khlebnikov A, Peringer P. Degradation of p-toluenesulphonic acid by Comamonas testosteroni in an aerobic counter-current structured packing biofilm reactor// Water Science and Technology. – 1996.-№ 5 – 6-Р. 257 - 266.
185. Balashov S. V., Boronin A. M. Sewadge-sludge bacterial isolates decomposing sulfoaromatic compounds// Microbiology. – 1996.- № 5-Р. 549 - 552.
186. Sequencing of Comamonas testosteroni strain B-356-biphenyl/chlorobiphenyl dioxygenase genes: Evolutionary relationships among Gram-negative bacterial biphenyl dioxygenases/ Sylvestre M., Sirois M., Hurtubise Y., Bergeron J., Ahmad D., Sharec F., Barriault D., Guillemette I., Juteau J. M.// Gene.- 1996.- Vol 174; № 2.-Р. 195 - 202.
187. Degradative pathways for p-toluenecarboxylate and p-toluenesulfonate and their multicomponent oxygenases in Comamonas tesosteroni strains PSB-4 and T-2/ Junker F., Saller E., Oppenberg H.R.S., Kroneck P.M.H., Leisinger T., Cook A.M.// Microbiology UK.- 1996.- Vol. 142; part 9.-Р. 2419 - 2427.
188. Hurtubise Y., Barriault D., Sylvestre M. Characterization of active recombinant his-tagged oxygenase component of Comamonas testosteroni B-356 biphenyl dioxygenase// Journal of Biological Chemistry.- 1996.- № 14-Р. 08152 - 08156.
189. Characterisation of the gene encoding quinihemoprotein ethanol dehydrogenase of Comamonas testosterone/ Stoorvogel J., Kraayveld D.E., Vansluis C.A., Jongejan J.A., Devries S., Duine J.A.// European Journal of Biochemistry.- 1996.- V. 0235; № 3.-Р. 00690 - 00698.
190. Junker F., Kiewitz R., Cook A.M. Characterization of the p-toluenesulfonate operon tsaMBCD and tsaR in Comamonas testosteroni T – 2// Journal of Bacteriology.- 1997.- № 3-Р. 919 - 927.
191. С. В. Балашов, Н. В. Балашова, А. М. Боронин. Плазмидный контроль деградации п-толуолсульфоновой кислоты штаммом Comamonas testosteroni BS1310// Микробиология.- 1997.- № 1-С. 65 - 69.
192. A. Khlebnikov, V. Zhoukov and P. Peringer. Comparison of p-toluenesulphonic acid degradation by two Comamonas strains// Biotechnology letters.- № 4-Р. 389 - 393.
193. B. E. Whiteman, J. R. Mihelcis, D. R. Lucking. Naphtalene biosorption in soil/ water systems of low or high sorptive capacity// Appl. Microbiol. Biotechnol.- 1995.- № 5-Р. 539 - 544.
194. Boronin A. M. Генетический контроль деградации и создание эффективных деградирующих штаммов// Acta Biotechnol.- 1991.- № 2-Р. 177 - 181.
195. Screening of xenobiotic compounds degrading microorganisms using biosensor techniques/ B. Bayersdorf-Radeck, K. Riedel, U. Karlson, T. T. Backmann, R. D. Schmid// Microbiology research.- 1996.- Vol. 153; № 3.-P. 239 - 245.